喜樹發(fā)根培養(yǎng)及培養(yǎng)基中次生代謝產(chǎn)物的研究.doc
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喜樹發(fā)根培養(yǎng)及培養(yǎng)基中次生代謝產(chǎn)物的研究,本文共30頁。、2.1萬余字摘要喜樹毛狀根培養(yǎng)不僅能生產(chǎn)喜樹堿,而且可把二次代謝物如喜樹堿等分泌至培養(yǎng)基中,利用現(xiàn)代生物技術(shù)與現(xiàn)代分離技術(shù)綜合開發(fā)喜樹和喜樹堿,這是喜樹資源的保護(hù)開發(fā)的新突破。本論文先對(duì)喜樹發(fā)根進(jìn)行培養(yǎng),然后使用氯仿提取喜樹培養(yǎng)基中喜樹堿等有效成分,并用hplc檢測法檢測其有效成分,檢測發(fā)現(xiàn)喜樹分泌在培...
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本文共30頁。、2.1萬余字
摘 要
喜樹毛狀根培養(yǎng)不僅能生產(chǎn)喜樹堿,而且可把二次代謝物如喜樹堿等分泌至培養(yǎng)基中,利用現(xiàn)代生物技術(shù)與現(xiàn)代分離技術(shù)綜合開發(fā)喜樹和喜樹堿,這是喜樹資源的保護(hù)開發(fā)的新突破。本論文先對(duì)喜樹發(fā)根進(jìn)行培養(yǎng),然后使用氯仿提取喜樹培養(yǎng)基中喜樹堿等有效成分,并用HPLC檢測法檢測其有效成分,檢測發(fā)現(xiàn)喜樹分泌在培養(yǎng)基中的次生代謝產(chǎn)物除了喜樹堿、羥基喜樹堿、白樺脂酸外,還含有其他有效成分。另外的氯仿提取法與樹脂吸附法對(duì)加了標(biāo)液的空白培養(yǎng)基進(jìn)行提取的對(duì)比實(shí)驗(yàn),證明了樹脂富集培養(yǎng)基中微量的喜樹堿的效果比氯仿提取的效果好,而且富集到的種類要比氯仿提取的多。這個(gè)實(shí)驗(yàn)為以后用樹脂作為吸附材料,從喜樹發(fā)根體系的培養(yǎng)基中富集喜樹堿做了很好的鋪墊。
關(guān)鍵詞:喜樹堿 喜樹發(fā)根培養(yǎng)基 氯仿提取 HPLC檢測
目 錄
1 緒論 1
1.1 前言 1
1.2 喜樹生物學(xué)特性與藥用價(jià)值 2
1.2.1 生物學(xué)特征 2
1.2.2 藥用價(jià)值 2
1.3 擴(kuò)大喜樹堿藥源途徑的研究 3
1.3.1 組織培養(yǎng)及喜樹細(xì)胞懸浮培養(yǎng) 3
1.3.2 利用毛狀根培養(yǎng)技術(shù)生產(chǎn)喜樹堿 4
1.3.2.1 發(fā)根農(nóng)桿菌的特性 4
1.3.2.2 毛狀根的轉(zhuǎn)化方法、培養(yǎng)和鑒定 5
1.4 光照對(duì)喜樹培養(yǎng)的影響 5
1.4.1 光照對(duì)毛狀根生長及其次生代謝產(chǎn)物合成因素的影響 5
1.4.2 光照對(duì)喜樹愈合組織生理及喜樹堿合成的影響 6
1.4.3 光強(qiáng)對(duì)喜樹幼苗葉片次生代謝產(chǎn)物喜樹堿的影響 6
1.5 大孔吸附樹脂吸附原理 6
1.6 喜樹堿的富集與檢測 7
1.7 本課題研究的內(nèi)容 7
2. 喜樹發(fā)根培養(yǎng) 7
2.1 喜樹枝條不同組織及基本培養(yǎng)基的篩選 7
2.2 不同種類、濃度的植物生長調(diào)節(jié)劑對(duì)喜樹莖段腋芽、不定根的誘導(dǎo) 9
2.3 發(fā)根農(nóng)桿菌感染喜樹莖的培養(yǎng) 10
3 喜樹發(fā)根培養(yǎng)基中次生代謝產(chǎn)物喜樹堿提取 11
3.1 試驗(yàn)材料與儀器 11
3.1.1 試驗(yàn)材料 11
3.1.2 試驗(yàn)儀器 11
3.1.3 色譜條件 11
3.2 試驗(yàn)方法 11
3.2.1 標(biāo)液的配置 11
3.2.2 喜樹培養(yǎng)基中喜樹堿等有效成分富集試驗(yàn) 12
4 HPLC法檢測喜樹堿等喜樹有效成分 12
4.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的測定 12
4.2 空白養(yǎng)基中喜樹堿的抽濾氯仿萃取與樹脂吸附的對(duì)比 15
4.3 培養(yǎng)基中富集喜樹堿等有效成分的HPLC檢測結(jié)果 15
4.3.1 培養(yǎng)基中培養(yǎng)產(chǎn)物喜樹堿等有效成分的檢測 15
4.3.2 喜樹培養(yǎng)基經(jīng)抽濾處理后濾渣與濾液中喜樹堿含量的對(duì)比 16
4.3.3 喜樹培養(yǎng)基中喜樹堿等有效成分的檢測結(jié)果 17
5 總結(jié)與討論 20
5.1 結(jié)論 20
5.2 存在問題與展望 20
5.2.1 存在的問題 20
5.2.2 展望 21
參 考 文 獻(xiàn) 22
英 文 摘 要 24
致 謝 25
1 緒論
1.1 前言
喜樹堿是一種從喜樹中分離出來具有抗癌活性的生物堿。喜樹廣泛分布于亞洲,在我國分布尤其多,為中國特有樹種。我國的野生喜樹可以作為藥用的葉片和種子資源總量為2158.09t和134.99t。由于喜樹主要分布在人為活動(dòng)區(qū),一直是毀林開田的砍伐對(duì)象,喜樹的野生種群已相當(dāng)少見。在我國,野生資源已經(jīng)處于瀕危狀態(tài),在某些地方已經(jīng)絕跡,現(xiàn)存的少量的野生資源也存在滅絕的危險(xiǎn),而且喜樹堿仍不能化學(xué)合成,所以喜樹資源仍是喜樹堿及其類似物的唯一來源。
面對(duì)野生喜樹資源已經(jīng)處于瀕危,且喜樹堿仍不能化學(xué)合成的殘酷現(xiàn)狀,利用現(xiàn)代生物技術(shù)與現(xiàn)代分離技術(shù)綜合開發(fā)喜樹和喜樹堿是喜樹資源的保護(hù)開發(fā)的新突破。Sakato、Arjon J等人的工作表明,通過細(xì)胞培養(yǎng)物中目標(biāo)產(chǎn)物含量很小,因此至今未有實(shí)際生產(chǎn)的應(yīng)用。發(fā)根農(nóng)桿菌誘導(dǎo)出的毛狀亙具有生長迅速、激素自養(yǎng)、生長條件簡單、次生代謝產(chǎn)物含量高且穩(wěn)定以及分化程度高、不易變異等特點(diǎn),此外尚可以從毛狀根培養(yǎng)物中尋找新的化合物。因此毛狀根技術(shù)被認(rèn)為是一條利用生物技術(shù)生產(chǎn)代謝新的有效途徑。國內(nèi)外學(xué)者在這方面。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。
參 考 文 獻(xiàn)
[1]中國樹木志編委會(huì). 中國主要樹種造林技術(shù)[M] . 北京:農(nóng)業(yè)出版社,1976.
[2]楊榮和,耿禮祥,等. 貴州省喜樹資源初步調(diào)查[J ] . 貴州林業(yè)科技,2001,29 (1):32 - 36.
[3]楊學(xué)義,朱立,孫超. 喜樹資源及其開發(fā)利用[J].資源與環(huán)境,2007,3(7):618-619
[4]馮建燦,張玉潔,等. 喜樹及喜樹堿開發(fā)利用進(jìn)展[J ] . 林業(yè)科學(xué),2000,36 (5):100 - 108.
[5]王洋,戴紹軍,閻秀峰. 光強(qiáng)對(duì)喜樹幼苗葉片次生代謝產(chǎn)物喜樹堿的影響[N]. 生態(tài)學(xué)報(bào),
2004,24(6):1118-1122.
[6]顧青,朱睦元. 光照對(duì)喜樹愈合組織生理及喜樹堿合成的影響[N].浙江林學(xué)院學(xué)報(bào),
2006,23(3):280~28
[7]劉展眉,崔英德,賓淑英. 喜樹及喜樹堿研究中的生物技術(shù)應(yīng)用[J].廣東化工,2006,(6):67-70.
[8]劉高,饒力群 ,楊華.影響毛狀根生長及其次生代謝產(chǎn)物合成因素的研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)通訊,2007,5(1):888-890
[9]孫君明,丁安林,沈黎明.光照對(duì)大豆幼苗組織中異黃酮含量和分布的影響[J].植物學(xué)報(bào),1998,40(1):1015
[10] Liu CZ,Guo C,Wang YC.et a1.Effect of light irradiation on hairy root growth and artemisinin biosynthesis of Artemisia annual [J].Process Biochem,2002,38:58l
[11]楊睿,付春祥,金治平,等.不同理化因子對(duì)雪蓮毛狀根生長和總黃酮生物合成的影響.生物工程學(xué)報(bào),2005,21(21):234
[12]楊榮和,耿禮洋,龍秀琴,等.貴州省喜樹資源初步調(diào)查[J].貴州林業(yè)科技,2001,29(1):32236.
[13]Griffith EC,Niwayama S,Ramsay CA,Chang YH.Molecular recognition of angiogenesis inhibitors fumagillin and ovalicin by methionine aminopeptidase2[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,1998,195(26):15183-15188.
[14]Sakato.K,Misawa M.Efects of chemical and Physical conditions on growth of Camptotheca acuminata cell cultures,Agr. Biol. Chem.,1974,38:491-497.
[15]Sakato I.,Tanaka H.,et a1.Isolation and identification of camptothecin from cells of Camptotheca acuminata suspension cultures.Agr.Bio1.Chem.,1974,38:2l7-2l8.
[16]Arjon.J.van Hengel M.P.Harkes et a1.,Characterization of callus formation and camptothecin Production by cell lines of Can Ptothecaacuina, Plant cell,Tissure and Oran Culture,1992.28:11-18.
[17]Sakato,K.,Tanaka.H.,Mukai,N.,Misawa, M.,1974.Isolation and identification of camptothecin from cells of Camptotheca acuminata suspension cultures.Agric.Bio1.Chem.38,217-218.
[18]Wiedenfeld,H.Furmanowa, M.Roeder,E.Guzewska, J.Gustowski,W,1997.Camptothecin and 10-hydroxycamptothecin in callus and plantlets of Camptotheca acuminata.Plant Cell Tiss.Org.Cult.49,213-2l8.
[19]A.K.Jain&C.L.Nessler.Clonal Propagation of Calptotheca acuminata through shoot bud culture.Plant Cel1.Tiss.And Org.Culture. 1996.44:229-233.
[20]Ciddi,V.,Shuler,M.L.,2000.Camptothecin from callus cultures of Nothapodytes foetida.Biotechno1.Lett.22,129-132.
[21]Fulzele,D.P.,Satdive,R.K,Pol,B.B 2001.Growth and production of camptothecin by cell suspension cultures of Nothapodytes foetida.Planta Med.67,15-l52.
[22]Tanaka N,Hayakawa M,Mano Y, et al,1985.Infection of turnip and radish storage roots with Agrobacterium rhizogenes[J].Plant Cell Report,4:74-77.
[23]Zheng ZR,Peng JS,Liu D, et al,1997.The mass culture of the hairy roots of Astragalus membranaceus[J].Plant Physiol Commun,32(2):l33-134.
[24]Zhou YQ,Zhang FG,Yuan BJ,1996.Review of studies on obtaining transgenic plants by Agrohacterium rhizogenes mediated gene transfer system[J].Hereditas,18(4):45.
[25]Shanks JV,BhadraR,Rijhwani S,et a1.Biotechnology and Bioengineering.1998,58:333
[26]Liu SN,Sun TE,Li GB,1998.Transformation of Ginkgo hairy root and establishmentofits suspension culture [J].J Wuhan Univ(Natural Science Edition)(武漢大學(xué)學(xué)報(bào)-自然科學(xué)版).1998, 44(2):l53-156.
[27]Wiedellfeld Helmut,Meroslawa Furmanowa,Erhard Roeder,Joanna Gu.Plant Cell Tissue and Organ Culture.1997, 49(3):213-2l8.
摘 要
喜樹毛狀根培養(yǎng)不僅能生產(chǎn)喜樹堿,而且可把二次代謝物如喜樹堿等分泌至培養(yǎng)基中,利用現(xiàn)代生物技術(shù)與現(xiàn)代分離技術(shù)綜合開發(fā)喜樹和喜樹堿,這是喜樹資源的保護(hù)開發(fā)的新突破。本論文先對(duì)喜樹發(fā)根進(jìn)行培養(yǎng),然后使用氯仿提取喜樹培養(yǎng)基中喜樹堿等有效成分,并用HPLC檢測法檢測其有效成分,檢測發(fā)現(xiàn)喜樹分泌在培養(yǎng)基中的次生代謝產(chǎn)物除了喜樹堿、羥基喜樹堿、白樺脂酸外,還含有其他有效成分。另外的氯仿提取法與樹脂吸附法對(duì)加了標(biāo)液的空白培養(yǎng)基進(jìn)行提取的對(duì)比實(shí)驗(yàn),證明了樹脂富集培養(yǎng)基中微量的喜樹堿的效果比氯仿提取的效果好,而且富集到的種類要比氯仿提取的多。這個(gè)實(shí)驗(yàn)為以后用樹脂作為吸附材料,從喜樹發(fā)根體系的培養(yǎng)基中富集喜樹堿做了很好的鋪墊。
關(guān)鍵詞:喜樹堿 喜樹發(fā)根培養(yǎng)基 氯仿提取 HPLC檢測
目 錄
1 緒論 1
1.1 前言 1
1.2 喜樹生物學(xué)特性與藥用價(jià)值 2
1.2.1 生物學(xué)特征 2
1.2.2 藥用價(jià)值 2
1.3 擴(kuò)大喜樹堿藥源途徑的研究 3
1.3.1 組織培養(yǎng)及喜樹細(xì)胞懸浮培養(yǎng) 3
1.3.2 利用毛狀根培養(yǎng)技術(shù)生產(chǎn)喜樹堿 4
1.3.2.1 發(fā)根農(nóng)桿菌的特性 4
1.3.2.2 毛狀根的轉(zhuǎn)化方法、培養(yǎng)和鑒定 5
1.4 光照對(duì)喜樹培養(yǎng)的影響 5
1.4.1 光照對(duì)毛狀根生長及其次生代謝產(chǎn)物合成因素的影響 5
1.4.2 光照對(duì)喜樹愈合組織生理及喜樹堿合成的影響 6
1.4.3 光強(qiáng)對(duì)喜樹幼苗葉片次生代謝產(chǎn)物喜樹堿的影響 6
1.5 大孔吸附樹脂吸附原理 6
1.6 喜樹堿的富集與檢測 7
1.7 本課題研究的內(nèi)容 7
2. 喜樹發(fā)根培養(yǎng) 7
2.1 喜樹枝條不同組織及基本培養(yǎng)基的篩選 7
2.2 不同種類、濃度的植物生長調(diào)節(jié)劑對(duì)喜樹莖段腋芽、不定根的誘導(dǎo) 9
2.3 發(fā)根農(nóng)桿菌感染喜樹莖的培養(yǎng) 10
3 喜樹發(fā)根培養(yǎng)基中次生代謝產(chǎn)物喜樹堿提取 11
3.1 試驗(yàn)材料與儀器 11
3.1.1 試驗(yàn)材料 11
3.1.2 試驗(yàn)儀器 11
3.1.3 色譜條件 11
3.2 試驗(yàn)方法 11
3.2.1 標(biāo)液的配置 11
3.2.2 喜樹培養(yǎng)基中喜樹堿等有效成分富集試驗(yàn) 12
4 HPLC法檢測喜樹堿等喜樹有效成分 12
4.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的測定 12
4.2 空白養(yǎng)基中喜樹堿的抽濾氯仿萃取與樹脂吸附的對(duì)比 15
4.3 培養(yǎng)基中富集喜樹堿等有效成分的HPLC檢測結(jié)果 15
4.3.1 培養(yǎng)基中培養(yǎng)產(chǎn)物喜樹堿等有效成分的檢測 15
4.3.2 喜樹培養(yǎng)基經(jīng)抽濾處理后濾渣與濾液中喜樹堿含量的對(duì)比 16
4.3.3 喜樹培養(yǎng)基中喜樹堿等有效成分的檢測結(jié)果 17
5 總結(jié)與討論 20
5.1 結(jié)論 20
5.2 存在問題與展望 20
5.2.1 存在的問題 20
5.2.2 展望 21
參 考 文 獻(xiàn) 22
英 文 摘 要 24
致 謝 25
1 緒論
1.1 前言
喜樹堿是一種從喜樹中分離出來具有抗癌活性的生物堿。喜樹廣泛分布于亞洲,在我國分布尤其多,為中國特有樹種。我國的野生喜樹可以作為藥用的葉片和種子資源總量為2158.09t和134.99t。由于喜樹主要分布在人為活動(dòng)區(qū),一直是毀林開田的砍伐對(duì)象,喜樹的野生種群已相當(dāng)少見。在我國,野生資源已經(jīng)處于瀕危狀態(tài),在某些地方已經(jīng)絕跡,現(xiàn)存的少量的野生資源也存在滅絕的危險(xiǎn),而且喜樹堿仍不能化學(xué)合成,所以喜樹資源仍是喜樹堿及其類似物的唯一來源。
面對(duì)野生喜樹資源已經(jīng)處于瀕危,且喜樹堿仍不能化學(xué)合成的殘酷現(xiàn)狀,利用現(xiàn)代生物技術(shù)與現(xiàn)代分離技術(shù)綜合開發(fā)喜樹和喜樹堿是喜樹資源的保護(hù)開發(fā)的新突破。Sakato、Arjon J等人的工作表明,通過細(xì)胞培養(yǎng)物中目標(biāo)產(chǎn)物含量很小,因此至今未有實(shí)際生產(chǎn)的應(yīng)用。發(fā)根農(nóng)桿菌誘導(dǎo)出的毛狀亙具有生長迅速、激素自養(yǎng)、生長條件簡單、次生代謝產(chǎn)物含量高且穩(wěn)定以及分化程度高、不易變異等特點(diǎn),此外尚可以從毛狀根培養(yǎng)物中尋找新的化合物。因此毛狀根技術(shù)被認(rèn)為是一條利用生物技術(shù)生產(chǎn)代謝新的有效途徑。國內(nèi)外學(xué)者在這方面。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。。
參 考 文 獻(xiàn)
[1]中國樹木志編委會(huì). 中國主要樹種造林技術(shù)[M] . 北京:農(nóng)業(yè)出版社,1976.
[2]楊榮和,耿禮祥,等. 貴州省喜樹資源初步調(diào)查[J ] . 貴州林業(yè)科技,2001,29 (1):32 - 36.
[3]楊學(xué)義,朱立,孫超. 喜樹資源及其開發(fā)利用[J].資源與環(huán)境,2007,3(7):618-619
[4]馮建燦,張玉潔,等. 喜樹及喜樹堿開發(fā)利用進(jìn)展[J ] . 林業(yè)科學(xué),2000,36 (5):100 - 108.
[5]王洋,戴紹軍,閻秀峰. 光強(qiáng)對(duì)喜樹幼苗葉片次生代謝產(chǎn)物喜樹堿的影響[N]. 生態(tài)學(xué)報(bào),
2004,24(6):1118-1122.
[6]顧青,朱睦元. 光照對(duì)喜樹愈合組織生理及喜樹堿合成的影響[N].浙江林學(xué)院學(xué)報(bào),
2006,23(3):280~28
[7]劉展眉,崔英德,賓淑英. 喜樹及喜樹堿研究中的生物技術(shù)應(yīng)用[J].廣東化工,2006,(6):67-70.
[8]劉高,饒力群 ,楊華.影響毛狀根生長及其次生代謝產(chǎn)物合成因素的研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)通訊,2007,5(1):888-890
[9]孫君明,丁安林,沈黎明.光照對(duì)大豆幼苗組織中異黃酮含量和分布的影響[J].植物學(xué)報(bào),1998,40(1):1015
[10] Liu CZ,Guo C,Wang YC.et a1.Effect of light irradiation on hairy root growth and artemisinin biosynthesis of Artemisia annual [J].Process Biochem,2002,38:58l
[11]楊睿,付春祥,金治平,等.不同理化因子對(duì)雪蓮毛狀根生長和總黃酮生物合成的影響.生物工程學(xué)報(bào),2005,21(21):234
[12]楊榮和,耿禮洋,龍秀琴,等.貴州省喜樹資源初步調(diào)查[J].貴州林業(yè)科技,2001,29(1):32236.
[13]Griffith EC,Niwayama S,Ramsay CA,Chang YH.Molecular recognition of angiogenesis inhibitors fumagillin and ovalicin by methionine aminopeptidase2[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,1998,195(26):15183-15188.
[14]Sakato.K,Misawa M.Efects of chemical and Physical conditions on growth of Camptotheca acuminata cell cultures,Agr. Biol. Chem.,1974,38:491-497.
[15]Sakato I.,Tanaka H.,et a1.Isolation and identification of camptothecin from cells of Camptotheca acuminata suspension cultures.Agr.Bio1.Chem.,1974,38:2l7-2l8.
[16]Arjon.J.van Hengel M.P.Harkes et a1.,Characterization of callus formation and camptothecin Production by cell lines of Can Ptothecaacuina, Plant cell,Tissure and Oran Culture,1992.28:11-18.
[17]Sakato,K.,Tanaka.H.,Mukai,N.,Misawa, M.,1974.Isolation and identification of camptothecin from cells of Camptotheca acuminata suspension cultures.Agric.Bio1.Chem.38,217-218.
[18]Wiedenfeld,H.Furmanowa, M.Roeder,E.Guzewska, J.Gustowski,W,1997.Camptothecin and 10-hydroxycamptothecin in callus and plantlets of Camptotheca acuminata.Plant Cell Tiss.Org.Cult.49,213-2l8.
[19]A.K.Jain&C.L.Nessler.Clonal Propagation of Calptotheca acuminata through shoot bud culture.Plant Cel1.Tiss.And Org.Culture. 1996.44:229-233.
[20]Ciddi,V.,Shuler,M.L.,2000.Camptothecin from callus cultures of Nothapodytes foetida.Biotechno1.Lett.22,129-132.
[21]Fulzele,D.P.,Satdive,R.K,Pol,B.B 2001.Growth and production of camptothecin by cell suspension cultures of Nothapodytes foetida.Planta Med.67,15-l52.
[22]Tanaka N,Hayakawa M,Mano Y, et al,1985.Infection of turnip and radish storage roots with Agrobacterium rhizogenes[J].Plant Cell Report,4:74-77.
[23]Zheng ZR,Peng JS,Liu D, et al,1997.The mass culture of the hairy roots of Astragalus membranaceus[J].Plant Physiol Commun,32(2):l33-134.
[24]Zhou YQ,Zhang FG,Yuan BJ,1996.Review of studies on obtaining transgenic plants by Agrohacterium rhizogenes mediated gene transfer system[J].Hereditas,18(4):45.
[25]Shanks JV,BhadraR,Rijhwani S,et a1.Biotechnology and Bioengineering.1998,58:333
[26]Liu SN,Sun TE,Li GB,1998.Transformation of Ginkgo hairy root and establishmentofits suspension culture [J].J Wuhan Univ(Natural Science Edition)(武漢大學(xué)學(xué)報(bào)-自然科學(xué)版).1998, 44(2):l53-156.
[27]Wiedellfeld Helmut,Meroslawa Furmanowa,Erhard Roeder,Joanna Gu.Plant Cell Tissue and Organ Culture.1997, 49(3):213-2l8.
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